Details
- Fach- und Aufgabenbereiche
-
- Bioverfahrenstechnik
- Verfahrens- und Umwelttechnik
- Industrielle Biotechnologie
- Innovationsmanagement mit Fokus Bioprozesstechnik
Weitere Informationen
- Studium Biotechnologie an der Hochschule Weihenstephan
- Studium Systems Engineering an der Hochschule München
- Promotion an der RWTH Aachen University, Lehrstuhl für Bioverfahrenstechnik
- langjährige Tätigkeit in der Biopharmazeutischen Industrie:
- Projektverantwortlicher Upstream Processing, Hexal Biotech
- Prozessingenieur, Roche Diagnostics
- Laborleiter Bioprozessentwicklung, Sandoz Austria
Forschungsbeauftragter der FK 09
Forschungsmasterbeauftragter der FK 09
Mitglied der Studiengangskommission Bachelor Bioingenieurwesen
Mitglied der Studiengangskommission Master Applied Research (Forschungsmaster)
Der Schwerpunkt angewandter Forschung von Prof. Huber liegt im Bereich Bioverfahrenstechnik und Industrieller Biotechnologie. Im Fokus steht dabei eine automatisierte Hochdurchsatz-Kultivierungsplattform basierend auf Mikrobioreaktoren sowie das parallelisierte online-Monitoring von Bioprozessen in Schüttelkolben und Mikrotiterplatten. Mit diesen Werkzeugen können Entwicklungs- und Optimierungszeiten für Bioprozesse stark reduziert werden. Zudem erlauben sie die schnelle Detektion von Nährstoffbedarfen sowie die Auswahl geeigneter Mikroorganismen für Bioprozesse.
Prof. Huber ist Mitglied in der Forschungsgruppe Industrielle Biotechnologie der Hochschule München, die Forschungsvorhaben mit öffentlichen Fördergeldgebern und Industriepartnern durchführt. Detaillierte Projektbeschreibungen finden sich unter dem nächsten Menüpunkt "Forschungsprojekte" auf dieser Seite.
Interview im Rahmen der High-Tech-Agenda Bayern
High Tech Agenda Bayern - Hochschule München
(hm.edu)
R3C2
Recycling of wastewater and low quality mineral building waste with the help of bio-cementation for use as aggregate in structural resource efficient concrete
Laufzeit: 01.03.2024 - 28.02.2028
Details anzeigenPAKBiocycle
Entwicklung eines Verfahrens für die Bioremediation von PAK- und Phenol-belasteten Bodenmaterialien mit Hilfe eines mikrobiellen Konsortiums
Laufzeit: 01.10.2024 - 31.05.2027
Details anzeigenMicroscale to pilot scale submerged fermentation of mycelia of the edible mushroom Laetiporus sulphureus based on side streams of the food industry
Laufzeit: 01.04.2024 - 31.03.2026
Details anzeigenBiCeRcrete
Biozementierung, R-Beton und alternative Bewehrung - Entwicklung ressourceneffizienter Betone mit 100% rezyklierter Gesteinskörnung für tragende bewehrte Bauteile - Einsatz von Biozementierung und neuer Bewehrungsmaterialien zur Optimierung der Bauteilperformance in der Baupraxis
Laufzeit: 01.10.2022 - 30.09.2025
Details anzeigenUreaseinhibition
Bestimmung des Einflusses verschiedener, neuartiger Inhibitoren auf die Ureaseaktivität für innovative Anwendungen im Bereich Futtermittel
Laufzeit: 15.05.2024 - 31.08.2024
Details anzeigenAMLAMO
Automated Machine Learning-Assisted Media Optimization
Laufzeit: 01.02.2022 - 31.12.2023
Details anzeigenMicrobialCrete
Anwendung von Biozementierung im Bauwesen
Laufzeit: 01.10.2019 - 30.06.2023
Details anzeigenMoP-Bio
Parallelisierter, geregelter Mikrobioreaktor für die Kultivierung und den Transport von 3D-Kulturen - Mobiler Perfusions Bioreaktor
Laufzeit: 01.11.2016 - 31.10.2018
Details anzeigenIm Rahmen der Förderlinie QualiFive der Hochschule München und dem BMBF-Projekt "ZUG" entstanden verschiedene neue Lehransätze, die in den Modulen "Bioverfahrenstechnik", "Verfahrens- und Umwelttechnik" sowie "Industrielle Biotechnologie" fest integriert und stetig weiterentwickelt werden.
- Forschendes Lernen
- Technisches Planspiel
- Neue Szenarien für Technisches Planspiel
Im Rahmen eigener FuE-Vorhaben sowie Industriekooperationen sind laufend Themen zu besetzen. Bei Interesse vereinbaren Sie bitte einen Termin oder stellen Sie Ihre Anfrage bitte per E-Mail mit Angabe Ihres geplanten Start-/ Endtermins und ggf. Themenvorschlags
Sie haben Interesse und Engagement spannende FuE-Projekte im Bereich Biotechnologie/Umwelttechnik gemeinsam voranzubringen?
Dann nehmen Sie bitte idealerweise vor einer Bewerbung per E-Mail Kontakt zu mir auf.
Weitere Informationen zum Masterstudium und offene Themen finden Sie auch unter Forschungsmaster.
| Publikationen |
|---|
| Lapierre, F., Huber, R., Feeding strategies for Sporosarcina pasteurii cultivation unlock more efficient production of ureolytic biomass for MICP. Biotechnology Journal, Volume19, Issue4. (2024). https://doi.org/10.1002/biot.202300466 |
| Lapierre, F., Huber, R., Revisiting the urease production of MICP-relevant bacterium Sporosarcina pasteurii during cultivation. Biocatalysis and Agricultural Biotechnology, 55, 102981. (2024). https://doi.org/10.1016/j.bcab.2023.102981 |
| Schütte, L., Hanisch, P., Scheler, N., Haböck, K., Huber, R., Ersoy, F., Berger, R., Squalene production under oxygen limitation by Schizochytrium sp. S31 in different cultivation systems. Applied Microbiology and Biotechnology, 108:201. (2024). https://doi.org/10.1007/s00253-024-13051-3 |
| Lapierre, F., Bolz, I., Büchs, J., Huber, R., Developing a fluorometric urease activity microplate assay suitable for automated microbioreactor experiments. Front. Bioeng. Biotechnol. (2022) 10:936759. doi.org/10.3389/fbioe.2022.936759 |
| Lapierre, F., Huber, R., Boosting biocemention by using a high-throughput microbioreactor to characterize microbial growth, enzyme activity, and precipitation kinetics. Chemie Ingenieur Technik, 94: 1235-1278. (2022) doi.org/10.1002/cite.202255075 |
| Lapierre, F., Kustermann, A. and Huber, R., Determination of nutritional requirements of calcite precipitating Sporosarcina pasteurii to increase biomass yield for biocementation. Chemie Ingenieur Technik, 92: 1230-1230. (2020) doi.org/10.1002/cite.202055301 |
| Lapierre F., Schmid J., Ederer B., Ihling N., Büchs J., Huber R. Revealing nutritional requirements of MICP-relevant Sporosarcina pasteurii DSM33 for growth improvement in chemically defined and complex media Sci Rep 10, 22448 (2020). doi.org/10.1038/s41598-020-79904-9 |
| Schmid J., Schwarz S., Fischer M., Sudhop S., Clausen-Schaumann H., Schieker M., Huber R. A laser-cutting-based manufacturing process for the generation of three-dimensional scaffolds for tissue engineering using Polycaprolactone/Hydroxyapatite composite polymer. Journal of Tissue Engineering, 23 July 2019, doi.org/10.1177/2041731419859157 |
| Schmid J., Schwarz S., Meier-Staude R., Sudhop S., Clausen-Schaumann H., Schieker M., Huber R. A perfusion bioreactor-system for cell seeding and oxygen-controlled cultivation of 3D-cell cultures. Tissue Engineering Part C: Methods, 2018, Vol. 24, No. 10 |
| Schmidberger T., Posch C., Sasse A., Gülch C., Huber R. Forecasting product quality and quantity of mammalian cell culture processes by performance based modeling. Biotechnol Prog. 2015 Jul-Aug;31(4):1119-27 |
| Palmen T., Scheidle M., Huber R., Kamerke C., Wiesner A., Dittrich B., Klee D., Büchs J. Influence of initial pH values on the lag phase of Escherichia coli and Bacillus licheniformis batch cultures. Chemie Ingenieur Technik, 2013, 85(6), 863–871 |
| Schmidberger T., Gutmann R., Bayer K., Kronthaler J., Huber R. Advanced online monitoring of cell culture off-gas using proton transfer reaction mass spectrometry. Biotechnol Prog. 2013 Dec 20. doi: 10.1002/btpr.1853. |
| Huber R., Roth S., Rahmen N., Büchs J. Utilizing high-throughput experimentation to enhance specific productivity of an E.coli T7 expression system by phosphate limitation. BMC Biotechnology 2011, 11:22 |
| Kunze M., Huber R., Gutjahr C., Müllner S., Büchs J. Predictive tool for recombinant protein production in E. coli shake flask cultures using an on-line monitoring system. Biotechnology Progress, 2011, 19 Oct, DOI: 10.1002/btpr.719 |
| Huber R., Wulfhorst H., Maksym L., Stehr R., Pöhnlein M., Jäger G., Spieß A., Büchs J. Screening for enzyme activity in turbid suspensions with scattered light. Biotechnol Progress, 2011 Mar/Apr, 27(2): 555-61 |
| Huber R. High-throughput experimentation for microscale cultivations and recombinant protein expression. Dissertation, RWTH Aachen University, 2010 |
| Huber R., Palmen T.G., Ryk N., Hillmer A.K., Luft K., Kensy F., Büchs J. Replication methods and tools in high-throughput cultivation processes - recognizing potential variations of growth and product formation by on-line monitoring. BMC Biotechnology, 2010, 10:22 |
| Drepper T., Huber R., Heck A., Circolone F., Hillmer A.K., Büchs J., Jaeger K.E. Flavin Mononucleotide-Based Fluorescent Reporter Proteins Outperform Green Fluorescent Protein-Like Proteins as Quantitative In Vivo Real-Time Reporters. Appl Environ Microbiol, 2010 Sep,76(17):5990-4 |
| Kottmeier K., Müller C., Huber R., Büchs J. Increased product formation induced by a directed secondary substrate limitation in a batch Hansenula polymorpha culture. Appl Microbiol Biotechnol, 2010 Mar,86(1):93-101 |
| Huber R., Ritter D., Hering T., Hillmer A.K., Kensy F., Müller C., Wang L., Büchs J. Robo-Lector – a novel platform for automated high-throughput cultivations in microtiter plates with high information content. Microbial Cell Factories, 2009, 8:42 |
| Huber R., Scheidle M., Dittrich B., Klee D., Büchs J. Equalizing growth in high-throughput small scale cultivations via precultures operated in fed-batch mode. Biotech Bioeng, 2009 Aug, 103(6):1095-102 |
| Grimm R., Huber R., Neumeier T., Seidl A., Haslbeck M., Seibert FS. A rapid method for analyzing recombinant protein inclusion bodies by mass spectrometry. Anal Biochem. 2004 Jul 1; 330(1):140-4 |
